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以下是PCR實驗常見問題及解決方案的總結,結合實驗關鍵點和優化建議:
1. 無目的條帶擴增?
可能原因?
模板過量(超過體系1/10)或裂解產物未稀釋?。
引物設計問題(如復性溫度不匹配)或引物降解?。
組織樣品不新鮮或DNA聚合酶失活?。
解決方案?
稀釋模板至合適濃度(如1mm3組織樣品)?。
重新設計引物或優化退火溫度(建議50-60℃)?。
使用新鮮樣品并更換酶制劑?。
2. 非特異性條帶?
可能原因?
鎂離子濃度過高或退火溫度過低?。
模板污染(如殘留雜質)或引物二聚體形成?。
解決方案?
降低鎂離子濃度(1.5-2.5mM)并提高退火溫度?。
純化模板或重新設計高特異性引物?。
3. 污染導致假陽性?
可能原因?
實驗室環境或試劑污染(如氣溶膠殘留)?。
NTC組出現擴增曲線?。
解決方案?
使用10%漂白劑清潔工作臺,分區操作(試劑配置與模板添加分離)?。
更換新試劑并驗證無核酸污染?。
4. 擴增效率低?
可能原因?
反應體系未優化(如酶活性不足)?。
循環數不足或變性時間過短?。
解決方案?
增加循環數至35-40輪,延長變性時間至30秒?。
添加PCR增強劑(如BSA或DMSO)?。
5. 電泳條帶異常?
可能原因?
模板降解或電泳條件不當?。
引物濃度過高導致引物二聚體?。
注:以上資料僅供參考,如需進一步技術支持,可聯系相關供應商?。
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